Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат icon

Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат



НазваниеИркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат
Дата конвертации09.08.2012
Размер265.44 Kb.
ТипРеферат
Санитарно-микробиологические исследования и контроль в лечебно-профилактических учреждении за внутрибольничными инфекциями


Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии РЕФЕРАТ Санитарно-микробиологические исследования и контроль в лечебно-профилактических учреждении за внутрибольничными инфекциями Проверил: Зав. Кафедрой проф. Киборт Р. В. Выполнил: Иркутск, 2002ПЛАН: Введение…………………………………………………………………3 1. Общие понятия…….………………………………………………….4 1.1 Этиология………………………………………………………….5 2. Возбудители госпитальных инфекций………………………………6 2.1Формирование госпитальных штаммов………………………….6 3. Объекты, материалы и методы исследования………………………9 3.1 Исследование микробной обсемененности воздушной среды..10 3.2 Исследования микробной обсемененности объектов внешней среды…………………………………………………12 3.3 Ориентировочный перечень объектов, подлежащих бактериологическому контролю………………………………13 3.4 Контроль на стерильность хирургического инструмента……...15 4. Правила забора материала на исследование………………………..17 5. Питательные среды используемые в микробиологических исследованиях………………………………………………………18 6. Список литературы…………………………………………………..23 ВВЕДЕНИЕ Внутрибольничные инфекции (синоним нозокомиальные инфекции) -инфекционные болезни, связанные с пребыванием, лечением, обследованием иобращением за медицинской помощью в лечебно-профилактическое учреждение.Присоединяясь к основному заболеванию, В. и. ухудшает течение и прогнозболезни. Проблемы В. и. приобрели большую актуальность в связи с появлением такназываемых госпитальных (как правило, полирезистентных к антибиотикам ихимиопрепаратам) штаммов стафилококков, сальмонелл, синегнойной палочки идругих возбудителей. Они легко распространяются среди детей и ослабленных,особенно пожилых, больных со сниженной иммунологической реактивностью,которые представляют собой так называемую группу риска. Внутрибольничные, или госпитальные, инфекции следует рассматриватьлюбые клинические распознаваемые инфекционные заболевания, возникающее убольных после госпитализации либо посещения лечебного учреждения с цельюлечения, а также у медицинского персонала в силу осуществляемой имдеятельности, не зависимо от того, проявляются или не проявляются симптомыэтого заболевания во время нахождения данных лиц в медицинском учреждение.Заболевания, связанные с оказанием медицинской помощи, также обозначаюттерминами ятрогения или нозокоминальные инфекции.1. Общие понятия Госпитальные инфекции оцениваются как одна из основных причин смерти.Летальность при различных нозологических формах колеблется от 3.5-60%, апри генирализованных формах достигает такого же уровня, как вдоантибитическую эру. В настоящее время во всём мире развернулась научная дискуссия овозникновения внутрибольничных инфекций в лечебно-профилактическихучреждениях. По данным официальной регистрации внутрибольничные инфекции вРоссийской Федерации развиваются у 0.15% госпитализированных больных.
Однако выборочные исследования показали, что госпитальные инфекциивозникают у 6.3% больных с колебаниями от 2.8-7.9%. В период с 1997-1999года в России зарегистрировано 50-60 тыс. случаев внутрибольничныхинфекций, а по расчётным данным Семина Н.А. число должно приближаться к 2.5млн. Большую опасность для пациентов и медицинского персонала представляюттакже вспышки гепатитов В и С, которые регистрируется в различных типахстационаров России. Для успешной борьбы с внутрибольничными инфекциями, то мнению Н.А.Семиной и др., необходимо оптимизировать эпидемиологический надзор и на егооснове проводить профилактические и противоэпидемиологические мероприятия,способствующие управлению эпидемическим процессом при этих инфекциях. Таким образом, актуальность проблемы госпитальных инфекций длятеоретической медицины и практического здравоохранения не вызываетсомнения. Она обусловлена с одной стороны высоким уровнем заболеваемости,летальности, социально-экономичесим и моральным ущербом наносимым здоровьюпациентов, а с другой стороны внутрибольничные инфекции наносятсущественный вред здоровью медицинского персонала. Следует отметить, что вусловиях Сибири эти вопросы изучены крайне недостаточно и требуют большоговнимания. В последние десятилетия внутрибольничные инфекции становятся всё болеезначимой проблемой здравоохранения, в экономически развитых странах онивозникают у 5-10% пациентов, что значительно отягощает течение основногозаболевания, создавая угрозу для жизнь больного, а также увеличиваетстоимость лечения. Во многом это связано с демографическими сдвигами (увеличение числа лиц преклонного возраста ) и накопления в популяции лицповышенного риска ( люди с хроническими заболеваниями, интоксикациями илипринимающие иммунодепрессанты ). Выделяют следующие основные причиныразвития внутрибольничных инфекции. - Формирование и селекция « госпитальных штаммов » микроорганизмов, обладающих высокой вирулентностью и множественной лекарственной устойчивостью. - Нерациональное проведение антимикробной химиотерапии и отсутствия контроля за циркуляцией штаммов с лекарственной устойчивостью. - Значительная частота носительства патогенной микрофлоры (например, золотистого стафилококка) среди медицинского персонала (достигает 40%). - Создание крупных больничных комплексов со своей специфической экологией – скученностью в стационарах и поликлиниках, особенностями основного контингента (преимущественно ослабленные пациенты), относительной замкнутостью помещений (палаты, процедурные кабинеты и т.д.). - Нарушения правил асептики и антисептики, отклонения от санитарно- гигиенических норм для стационаров и поликлиников1. Эпидемиология Внутрибольничную инфекцию регистрируют повсеместно, в виде вспышек илиспородических случаев. Практически любой пациент стационара предрасположенк развитию инфекционных процессов. Внутрибольничные инфекции характеризуютвысокая контагиозность, широкий спектор возбудителей и разнообразные путиих передачи; возможность вспышек в любое время года, наличие пациентов сповышенным риском заболевания и возможность рецедивов. Особенностиэпидемиологического процесса зависят от свойств возбудителя, типаучреждеждения, контингента больных, качества организации медицинскойпомощи, санитарно-гигиенического и противоэпидемического режимов.Необходимо отметить значительное обсеменение объектов окружающей средывследствие активной циркуляции «госпитальных» штаммов условно-патогенноймикрофлоры между больными и персоналом, способствующее формированию новогоконтингента носителей. Иначе говоря, происходит «естественный кругооборот»условно-патогенной микрофлоры по схеме «медицинский персонал (больные) >внешняя среда > медицинский персонал (больные)», поддерживающий постоянныйэпидемический процесс в ЛПУ. Не меньшее значение имеют медицинскиеманипуляции их характер. Часто внутрибольничные инфекции возникают послеоперативных вмешательств и инвазивных лечебных и диагностических процедур(например, катетеризация вен или мочевого пузыря). Определённый «вклад»вносит новая медицинская аппаратура, требующая особых методов стерилизации(см таб. 1. Факторы, предрасполагающие к развитию инфекций.) Как правило,внутрибольничные инфекции возникают на фоне основного заболевания либо,реже, первично развиваются у новорожденных. - Внутрибольничные инфекции может вызвать практически любой патогенный или условно-патогенный микроорганизм. Возбудитель внутрибольничные инфекции могут передаваться воздушно-капельным, воздушно-пылевым, алиментарным путями, трансфузионно,трансплацентарно, при прохождении плода по родовым путям, половым и другимипутями. ( см таб.4 Передача инфекции больничному персоналу и от больничногоперсонала, и таб.3. Основные источники госпитальных инфекций)1. Возбудители госпитальных инфекций Спектор возбудителей внутрибольничных инфекции охватывает вирусы,бактерии, грибы и простейших, представленных наиболее вирулентными«госпитальными» штаммами (см таб.2. Основные возбудители внутрибольничныхинфекции). Ежегодно их число увеличивается, преимущественно за счёт условно-патогенных микроорганизмов. Основные возбудители бактериальных инфекций –стафилококки, пневмококки, грамотрицательные энтеробактерии, псевдомонады ианаэробы. Ведущую роль играют стафилококки (до 60% всех случаеввнутрибольничных инфекции), грамотрицательные бактерии, респираторныевирусы и гривы рода Candida.1 Формирование госпитальных штаммов В литературе широко используется термин «госпитальный штамм» микроба,однако единого понимания этого понятия не существует. Некоторые считают,что госпитальный штамм – это тот, который выделяется от больных независимоот его свойств. Чаще всего под госпитальными штаммами понимаются культуры,которые выделяются от больных в стационаре и характеризуются ярковыраженный резистентностью к некоторому количеству антибиотиков, т.е.,согласно этому пониманию, госпитальный штамм есть результат селективногодействия антибиотиков. Именно такое понимание вложено в первое, имеющееся влитературе, определение госпитальных штаммов, данное В.Д. Беляковым исоавторами. Штаммы бактерий, выделенные от пациентов с нозокоминальными инфекциями,как правило, более вирулентны и обладают множественнойхимиорезистентностью. Широкое использование антибиотиков с лечебной ипрофилактической целями лишь частично подавляет рост устойчивых бактерий иприводит к селекции устойчивых штаммов. Происходит формирование «порочногокруга» - возникающие внутрибольничные инфекции требуют применениявысокоактивных антибиотиков, способствующих в свою очередь появлению болееустойчивых микроорганизмов. Не менее важным фактором следует считатьразвитие дизбактериозов, возникающих на фоне антибиотикотерапии иприводящих к колонизации органов и тканей условно-патагеннымимикроорганизмамиТаб. 1. Факторы, предрасполагающие к развитию инфекций.|Внешние факторы |Микрофлора |Инвазивные |Медицинский ||(специфичны для |пациента |медицинские |персонал ||любого | |манипуляции, | ||стационара) | |проводимые в | || | |стационаре | ||Аппаратура и |Кожные покровы |Длительная |Постоянное ||инструментарий | |катетеризация |носительство || | |вен и мочевого |патогенных || | |пузыря |микроорганизмов ||Пищевые продукты|ЖКТ |Интубация |Временное || | | |носительство || | | |патогенных || | | |микроорганизмов ||Воздух |Мочеполовая |Хирургические |Больные или || |система |нарушение |инфицированные || | |целостности |сотрудники || | |анатомических | || | |барьеров | ||Лекарственное |Дыхательные пути|Эндоскопия | ||средство | | | |Таб.2. Основные возбудители внутрибольничных инфекции|Бактерии |Вирусы |Простейшие |Грибы ||Стафилококки |HBV, HCV,HDV |Пневмоцисты |Кандида ||Стрептококки |HIV | |Аспиргиллы ||Синегнойная |Вирусы гриппа и |Криптоспоридии | ||палочка |другие ОРВИ | | ||Эторобактерии |Вирус кори | | ||Эшерихии |Вирус краснухи | | ||Сальмонеллы |Вирус | | || |эпидемиоло-гичесокг| | || |о паротита | | ||Шигеллы | | | ||Иерсинии |Ротавирус | | ||Мистерия | | | ||Камбилобактерии |Энтеробактерии | | ||Легионеллы |Вирус герпеса | | ||Клостридии |Цитомегаловирус | | ||Неспорообразую-щие| | | ||анаэробные | | | ||бактерии | | | ||Микоплазмы | | | ||Хломидии | | | ||Микобактерии | | | ||Бордетеллы | | | |Таб.3. Основные источники госпитальных инфекций|Источник |Роль источника в распространении ||Больные |Основной источник; роль в распространении при || |различных нозологических формах и в различных || |стационарах варьирует ||Носители |Имеет большое значение в распространении || |стафилококковых инфекций, гепатитов B, C и D, || |сальмонеллез, шигеллез и др. ||Медицинские |Чаще бессимптомые носители преимущественно ||работники |«госпитальных» штаммов; играют важную роль в || |распространении возбудителей респираторных инфекций|| |(пневмоцитозов, пневмоний, бронхитов и ОРВИ). || |Частота носительства могу достигать 50%. ||Лица, |Большого значения не имеют, могут быть носителями ||привлекаемые к |стрептококков, стафилококков, энтеро - и ||уходу за |камбилобактерий, возбудителей венерических ||больными |болезней, ротавирусов, цитомегаловирусов и прочих || |герпетовирусов, возбудителей гепатитов и дифтерии, || |пневмоцист. ||Посетители, |Роль очень ограничена, могу быть носителями ||навещающие |стафилококков, энтеробактерий либо болеть ОРВИ. ||больных | |Таб.4. Передача инфекции больничному персоналу и от больничного персонала|Заболевания |Путь передачи || |От больного к |От медицинского || |медицинскому |персонала || |персоналу |к больному ||СПИД |- |- ||Ветреная оспа / диссемированный |Высокий |Высокий ||опоясывающий лишай | | ||Локализованный опоясывающий лишай |Низкий |Низкий ||Вирусный коньюктивит |Высокий |Высокий ||Цитомегаловирусная инфекция |Низкий |- ||Гепатит А |Низкий |Редко ||Гепатит В |Низкий |Редко ||Гепатит ни А ни В |Низкий |- ||Простой герпес |Низкий |Редко ||Грипп |Умеренный |Умеренный ||Корь |Высокий |Высокий ||Менингококковая инфекция |Редко |- ||Эпидемиологический паротит |Умеренный |Умеренный ||Коклюш |Умеренный |Умеренный ||Респираторный синцитиальный вирус |Умеренный |Умеренный ||Ротавирус |Умеренный |Умеренный ||Краснуха |Умеренный |Умеренный ||Salmonella/Shigella |Низкий |Низкий ||Чесотка |Низкий |Низкий ||S. aureus |- |Редко ||Стрептококк, группа А |- |Редко ||Сифилис |Низкий |- ||Туберкулез |От низкого |От низкого || |до высокого |до высокого |2. Объекты, материалы и методы исследования Объектами исследования при проведении бактериологического контроляявляются: - воздушная среда; - различные объекты внешней среды; - хирургический инструментарий; - шприцы, иглы; - системы переливания крови многократного использования. - зонды, катетеры, бужи, резиновые перчатки и др.изделия изрезины и пластикатов; - хирургический шовный материал, подготовленный к использованию; - руки хирургов и кожа операционного поля. Изучение санитарно-гигиенических условий включает определениетемпературы воздуха в основных помещениях (больничные палаты, процедурные,перевязочные, операционные и другие помещения) с применением ртутных испиртовых термометров, относительную влажность измеряется с помощьюпсихрометра Ассмана, скорость движения воздуха шаровым кататерометром,освещенность люксиметром Ю-16. Замеры проводится по общепринятым методамсогласно современных нормативных документов. В понятия микробиологический контроль стационара включаетсябактериологическое обследование объектов окружающей среды на наличиепатогенных микроорганизмов, способных вызвать внутрибольничные инфекции.Плановый бактериологический контроль основывается на определении общегомикробного обсеменения и определения санитарно-показательныхмикроорганизмов (стафилококки, бактерии группы кишечной палочки и др.). Припроведении бактериологических исследований набор помещений, в которыхпроизводится отбор проб, и перечень предметов окружающей среды,подвергающихся обследованию, определяется в соответствии с приказом МЗ СССР№ 720 от 31.07.1978 г.1. Исследование микробной обсемененности воздушной среды.Основные положения при отборе проб воздуха: - при высоком содержании микроорганизмов в воздухе исследуется небольшие объемы (число выросших колоний не превышает 200-300, так как при большем числе трудно проводить микробиологические исследования колоний); - при низком содержании микроорганизмов или необходимости обнаружения патогенных бактерий существенно увеличивались объемы протянутого воздуха. Пробы воздуха отбираются на уровне дыхания сидячего или стоячегочеловека. Определяется общее микробное число в одном кубометре воздуха иналичие золотистого стафилококка. Исследования проводится в динамике дляоценки санитарно-гигиенического режима окружающей среды стационара. Бактериологическое исследование воздушной среды предусматривает: - определение общего содержания микробов в 1 куб. м воздуха. - Определение содержания золотистого стафилококка в 1 куб. м воздуха. Отбор проб воздуха для бактериального исследования проводят в следующихпомещениях: - операционных блоках; - перевязочных; - послеоперационных палатах; - отделениях и палатах реанимации и интенсивной терапии и др. помещениях, требующих асептических условий. Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью аппаратаКротова. Скорость протягивания воздуха составляет 25 л в минуту.Количество пропущенного воздуха должно составлять 100 литров дляопределения общего содержания бактерий и 250 литров для определения наличиязолотистого стафилококка. Исследование воздуха седиментационным методомдопускается в исключительных случаях. Для определения общего содержания бактерий в 1 куб.м воздуха забор пробпроводят на 2% питательный агар. Посевы инкубируют при температуре 37°С втечение 24 часов, затем оставляют на 24 часа при комнатной температуре,подсчитывают количество колоний, выросших и производят перерасчет на 1куб.м воздуха. Если на чашках питательного агара выросли колонии плесневыхгрибов, их подсчитывают и делают пересчет на 1 куб.м воздуха. В протоколеколичество плесневых грибов указывают отдельно. Примечание: При переносе аппарата Кротова из одного помещения в другоеего поверхность обрабатывают дезинфицирующим раствором. Столик, внутренниестыки и крышку прибора с внутренней и внешней стороны протирают спиртом(70%). Для определения наличия золотистого стафилококка забор проб проводят нажелточно-солевой агар (ЖСА). Чашки помещают в термостат при 37°С на 24 часаи выдерживают еще 24 часа при комнатной температуре. Колонии,подозрительные на стафилоккок, подлежат обязательной микроскопии идальнейшей идентификации. С желточно-солевого агара снимают в первуюочередь колонии стафилококка, которые образуют радужный венчик вокругколонии (положительная лецитовителлазная реакция), дальнейшему зучениюподвергают также пигментированные колонии и с отрицательнойлецитовителлазной реакцией. Подозрительные колонии пересевают а чашки скровяным или молочным агаром. Дальнейшее изучение их проводят по схеме.Схема бактериологического исследования на стафилококк.Первый день. Посев на элективные среды (желточно-солевой, молочно-олевой илимолочно-желточно-солевой агар). Засеянные среды выдерживают в термостатепри 37°С в течение 2 суток, либо одни сутки в термостате и дополнительно24 часа на свету при комнатной температуре.Второй-третий день. Просмотр чашек, фиксация в журнале характера и массивности роста. Навышеуказанных средах стафилококк растет в виде руглых, блестящих,маслянистых, выпуклых пигментированных колоний. На средах, содержащихжелток, золотистый стафилококк, деленный от человека, в 60-70% случаевобразует радужный венчик вокруг колонии (положительная лецитовителлазнаяреакция). Стафилококки животного происхождения дают положительнуюлецитовителлазную реакцию в 5-10% случаев. Отвивка на скошенный агар длядальнейшего исследования не менее 2-х колоний, подозрительных настафилококк. Для исследования отвивают прежде всего колонии, дающиеположительную лецитовителлазную реакцию. При тсутствии на чашках такихколоний дальнейшему исследованию подвергаются пигментированные колонии,схожие по морфологии со стафилококком. При одновременном наличии на чашкахколоний стафилококка, отличающихся по пигменту, следует отвивать не менеедвух колоний различного вида. Пробирки с посевом помещают в термостат при37°С на 18-20 часов.Четвертый день. После суточной инкубации у выделенных штаммов проверяют морфологию,тинкториальные свойства (окраска по Граму) и наличие плазмокоагулирующейактивности. Следует отметить, что характер роста культуры на скошенномагаре в ряде случаев дает возможность "предвидеть" принадлежность ее квиду золотистого стафилококка или эпидермального стафилококка. Первые, какправило, дают обильный равномерный, сочный рост, вторые - очень скудный инеравномерный рост по ходу посева. Окраску по Граму проводят общепринятымметодом. Под микроскопом окрашенные по Граму стафилококки имеют видфиолетово-синих кокков, располагающихся гроздьями или небольшими кучками("кружево"). Плазмокоагулирующую активность проверяют в реакции коагуляцииплазмы (РКП). С учетом результатов РКП и лецитовителлазной активности в 70-75% случаев, на четвертый день исследования может быть подтвержденапринадлежность выделенного штамма к виду золотистого стафилококка и выдансоответствующий ответ. На схеме представлены возможные варианты сочетанийрезультатов определения плазмокоагулирующей и лецитовителлазной активности.Если культура обладает только плазмокоагулирующей или тольколецитовителлазной активностью, то для окончательного ответа требуетсяопределение других признаков патогенности (ферментации маннита в аэробныхусловиях - АФМ или ДНКазной активности). В этих случаях ответ выдают взависимости от результатов, полученных при определении названных признаков.В случае необходимости на 4-ый день исследования может быть поставленареакция определения ДНКазной активности или анаэробной ферментации маннита.Определение антибиограммы проводят только после выделения чистой культуры,по показаниям (выбор способа лечения и т.д.). Выделенные культурызолотистого стафилококка подлежат фаготипированию.Пятый день. Учет результатов фаготипирования, определения чувствительности кантибиотикам, ДНКазной активности. Окончательная выдача ответа.2. Исследования микробной обсемененности объектов внешней среды. Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметоввнешней среды предусматривает выявление стафилококка синегнойной палочки,бактерий группы кишечных палочек и аэроманад (строго по показаниям).Забор проб с поверхностей различных объектов осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках,вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками, размером 5х5 см,простерилизованными в бумажных пакетах или в чашках Петри. Дляувлажнения тампонов в пробирки с тампонами наливают по 2,0 млстерильного физиологического раствора. При использовании салфетокстерильный физиологический раствор разливают в стерильные пробирки по 2,0мл. Салфетку захватывают стерильным пинцетом, увлажняют физиологическимраствором из пробирки, после протирания исследуемого объекта помещают в туже пробирку. При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всегопредмета. При контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят внескольких местах исследуемого предмета площадью примерно в 100-200 кв. см. Для выделения стафилококков делают посев непосредственно на чашкуПетри с желточно-солевым агаром (см. схему исследования на стафилококк). Кроме того, в качестве среды накопления используют бульон с 6,5%хлористого натрия, бульон с 1% глюкозы, разлитые в пробирки по 0,5 мл, вкоторые засевают по 0,2-0,3 мл смывной жидкости. Засеянные пробиркиинкубируют при 37°С в течение 20-24 часов, после чего делают высев на ЖСА (см. схему исследования на стафилококк). Для выявления бактерий группы кишечных палочек производят посев насреду обогащения, для чего тампон (марлевую салфетку) погружают в 10-20%желчный бульон или среду Кесслера. Через сутки инкубирования при 37°Сделают пересев на среду Эндо. Подозрительные колонии на среде Эндомикроскопируют и пересеивают на 2-ую бродильную пробу - среду Гисса с глюкозой. Среду выдерживают 24 часа при 43°С. Примечание: При использовании свиной желчи для приготовленияжелчного бульона, концентрация желчи должна быть в 20 раз меньше. Для выявления синегнойной палочки специальные посевы можно непроизводить. Обычно колонии синегнойной палочки удается выявить накровяном агаре или на среде Эндо. Колонии, подозрительные на синегнойнуюпалочку, пересевают на скошенный агар, содержащий 2-5% глицерина илиманнита. Колонии синегнойной палочки дают на поверхности скошенногоагара обильный рост с зеленоватым оттенком, маслянистой консистенциис характерным медовым запахом. Выделенную культуру окрашивают поГраму, микроскопируют, определяют гемолитические свойства путем высева начашку с кровяным агаром.3.3 Ориентировочный перечень объектов, подлежащих бактериологическомуконтролю:А. Наркозная комната 1. Инкубационная трубка 2. Маска наркозного аппарата 3. Тройник наркозного аппарата 4. Гофрированная трубка 5. Ларингоскоп 6. Роторасширитель 7. Дыхательный мешок 8. Руки врачей анестезиологов-реаниматологов, сестер-анестезистовБ. Предоперационная 1. Тазы для мытья рук хирургов 2. Чистые щетки для мытья рук 3. Фартуки (клеенчатые или полиэтиленовые)В. Операционная 1. Рабочий стол анестезиологов 2. Операционный стол 3. Шланг вакуумнасоса 4. Шланг кислородной подводки 5. Смывы с рук всех участвующих в операции 6. Кожа операционного поляГ. Послеоперационные палаты, отделения и палаты реанимации и интенсивнойтерапии 1. Кровать, подготовленная для больного 2. Полотенце для рук персонала и смывы с рук 3. Щетка на раковине 4. Шланг кислородной подводки 5. Запасная наркозная аппаратура (набор реанимационной укладки) 6. Шланг вакуумотсоса 7. Внутренняя поверхность холодильника (для хранения лекарств) 8. ГрадусникиД. Перевязочная 1. Кушетка для перевязок 2. Полотенце для рук персонала 3. Щетка на раковине 4. Халат медицинских сестер 5. Руки врачей, медицинских сестер 6. Рабочий медицинский стол 7. Внутрення поверхность холодильника для хранения лекарств3.4 Контроль на стерильность хирургического инструментаИнструментарии для медицинских манипуляции по риску различяют: Критические - проникают в стерильные ткани или сосуды: имплантаты,скальпели, иглы, другие хирургические инструменты и т.д. Стерилизация -спороцидные химические вещества, длительный контакт. Средства длястерилизации или дезинфекции Полукритические - соприкасаются со слизистыми оболочками (заисключением стоматологических инструментов):г ибкие эндоскопы,ларингоскопы, эндотрахеальные трубки, а также другие аналогичныеинструменты. Дезинфекция высокого уровня - спороцидные химические вещества,кратковременный контакт. Средства для стерилизации или дезинфекции Термометры, ванны для гидротерапии. Дезинфекция среднего уровня.Больничные дезинфицирующие средства с указанием в маркировке о наличиитуберкулоцидной активности. Некритические (соприкасаются с неповрежденной кожей): стетоскопы,настольные приборы, подкладные судна и др. Дезинфекция низкого уровня.Больничные дезинфицирующие средства без указания в маркировке о наличиитуберкулоцидной активности. Хирургический инструментарий с помощью стерильного пинцета извлекают избикса или мягкой упаковки и целиком погружают в пробирки с питательнымисредами. Как исключение, в отдельных случаях, если все простерилизованныеинструменты в одной упаковке крупных размеров (иглодержатели,ранорасширители и т.д.), производят смыв с поверхности инструментастерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом раствореили стерильной водопроводной воде и погружают салфетку в пробирку стиогликолевой средой. Аналогичные смывы с других инструментов засевают впробирки со средой Хоттингера и Сабуро. Методика посева на стерильность игл и шприцев. Для контроля настерильность отбирают шприцы малой емкости (1,0 или 2,0 мл) в условиях бактериологического бокса, с соблюдением правил асептики погружают впробирки с питательными средами отдельно цилиндр, поршень, иглы. Принеобходимости контроля шприцев большой емкости (10, 20 мл и более)исследование стерильности производят методом смыва, при этом стерильнойсалфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе иливодопроводной воде, протирают с помощью пинцета внутренние части шприца ипогружают салфетку в питательную среду. Исследование на стерильность систем переливания крови многоразовогоиспользования. От резинового шланга, ближе к игле, отрезают ножницамис помощью пинцета небольшие кусочки (1-2 см) и погружают в пробирки спитательными средами, иглу отдельно погружают в питательные среды. Посев на стерильность катетеров, резиновых перчаток и др. изделий изрезины и пластикатов. Контроль стерильности зондов, катетеров, резиновыхперчаток и других изделий из резины производят путем полногопогружения мелких изделий в питательные среды, от более крупных спомощью стерильного пинцета стерильными ножницами отрезают небольшиекусочки (1-2 см) и погружают в питательные среды. Посев на стерильность хирургического шовного материала. Перед посевомемкость с отобранными образцами шовного материала в предбокснике протираютстерильной марлевой салфеткой, обильно смоченной 6% раствором перекисиводорода, и оставляют на 30 минут. Затем вносят в бокс. 1. Кетгут. Подготовленный к работе кетгут в операционном блоке хранят в спиртовом растворе йода. Кетгут перед посевом подвергают специальной обработке для нейтрализации и отмывания нейтрализующего раствора. Моток кетгута, приготовленный для исследования, перекладывают стерильным карнцангом или пинцетом в стерильный 10% раствор гипосульфита натрия. Раствор гипосульфита натрия готовят на дистиллированной воде, разливают в пробирки (колбы) по 20-30 мл, стерилизуют текучим паром по 30 минут в продолжении 3 дней. Кетгут выдерживают в растворе гипосульфита в течение 24 часов при комнатной температуре (возможно помутнение раствора за счет выпадения серы), затем перекладывают в пробирки с 20-30 мл стерильной дистиллированной воды, где также выдерживают в течение 24 часов при комнатной температуре. Непосредственно перед посевом оток кетгута извлекают стерильным пинцетом и перекладывают в терильную чашку Петри, с помощью пинцета и ножниц его разрезают на мелкие кусочки длиной 1-2 см и раздергивают для прорастания микроорганизмов кетгута. Посев производят в 2 пробирки с тиогликолевой средой, 2 пробирки со средой Сабуро и 2 пробирки со средой Хоттингера, помещая в каждую пробирку по 4-5 кусочков исследуемого материала. 2. Шелк. Подготовленный к работе шелк в операционных хранят в спиртовом растворе, поэтому перед посевом шелк (лавсан) помещают на 24 часа в стерильную дистиллированную воду при комнатной температуре. Перед посевом моток шелка (лавсана) перекладывают в стерильные чашки Петри, разрезают на мелкие кусочки длиной 1-2 см. Посев шелка производят так же как и кетгута. Исследование на стерильность аппаратов экстракорпоральногокровообращения. Исследование на стерильность аппарата искусственногокровообращения проводит бактериолог и лаборант лечебно-профилактическогоучреждения в операционной после асептической сборки аппарата.Контролю подлежат: - смыв из аппарата; - перфузат до перфузии; - кровь после перфузии. Стерильный физиологический раствор в количестве не менее 250 млпрогоняют через аппарат, подготовленный к операции, отбирают 100 млраствора и засевают на питательные среды. Аналогично производят посевперфузата до перфузии и крови после перфузии. Посев на стерильность перевязочного материала. Бинты, ватные шарики,марлевые салфетки, турунды и т.п. отбирают из разных мест бикса стерильнымпинцетом. Мелкие изделия целиком погружают в пробирки с питательнымисредами. От бинтов (внутренних частей) и крупных марлевых салфеток спомощью стерильных ножниц отрезают кусочки и погружают в пробирки спитательными средами. На каждый вид перевязочного материала используютпо 2 пробирки каждой среды. Посев на стерильность хирургического белья. Простерилизованными ифламбированными ножницами (смоченными в спирте и проведенными через пламягорелки) с помощью пинцета от хирургического белья отрезают небольшиекусочки ткани (завязка, внутренние швы и т.п.) и погружают в пробирки(колбы) с питательными средами, по возможности, не касаясь пробирки(колбы).4. Правила забора материала на исследование В соответствии с Приказом Министерства здравоохранения № 535 от22.04.1985 г. и № 8 от 19.01.1995 г. задачи по совершенствованию иунификации диагностической базы возлагаются прежде всего на лабораториюклинической микробиологии. Поэтому микробиологические аспекты деятельностибольничного эпидемиолога на практике сводится к организации и контролюправильного взятия, хранения и транспортировки материала длямикробиологического исследования. Биологический материала микробиологических методов исследования следуетбрать в максимально стерильных условиях, тщательно соблюдая правилаасептики и по возможности избегая контаминации образцов микроорганизмами изокружающей среды. Образцы для посевов необходимо брать до начала леченияантибактериальными препаратами или в интервалах между приёмом антибиотиков(не менее 12 часов). Отобранный материал должен быть маркирован и как можнобыстрее доставлен в микробиологическую лабораторию. При необходимостиобразцы помещают в транспортную среду. Некоторые образцы требуют храненияпри t 37°, другие – при пониженной (холодильнике).5. В микробиологических исследованиях применяются следующие питательныесреды: 1. Для определение общего микробного числа микроорганизмов используется чаще всего 1% пептонную воду или мясопептонный бульон (МПБ). 2. Для обнаружение стафилококков используется: - молочно-солевой агар: к 1 л мясопептонного бульона добавляют 65 г хлорида натрия и 20 г сухого агар-агар. Разливают по колбам и стерилизуют при 120°С 20 мин. Перед посевом к расплавленному и охлажденному до 45°С агару добавляют 10% стерильного молока, равномерно смешивают и разливают в чашки Петри. - желточно-солевой агар Чистоковича. 100 мл желточной эмульсии (один желток, размешанный в 200 мл изотонического раствора хлорида натрия) вливают в 300 мл расплавленного и охлажденного до 50°С мясопептонного и разливают в стерильные чашки Петри. - молочно-желточно-солевой агар. В 1 л дистиллированной воды растворяют при нагревании сухой питательный агар в количестве, указанном на этикетке банки, и 90 г хлорида натрия; разливают в колбы, стерилизуют при 120°С 20 мин. Перед употреблением в расплавленный и остуженный до 50°С агар добавляют 60мл стерильного молока, один желток (тщательно разбитый стеклянными бусами с 50 мл изотонического раствора хлорида натрия), полимиксин М 300 000 ЕД. Среду перемешивают и разливают в чашки: по 20-25 мл для использование при подращивании стафилококков на мебрананных фильтрах и по 12-15 мл (тонким слоем) для прямого посева. 3. Для обнаружение бактерий группы кишечных палочек: - используется глюкозопептонную воду (ГПС), среда Эйкмана. Концентрированная среда: в 1 л воды растворяют 100 г пептона, 50 г хлорида натрия, 50 г глюкоза, нагревают смесь до кипения, фильтруют, устанавливают рН 7,4-7,6, разливают по 10 мл в колбы (емкостью по 100-250 мл) с поплавками и по 1 мл в пробирки с поплавками. В среду можно добавить индикатор Аедреде (кислый фуксин, обесцвеченный щелочью) или бромтимоловый синий. Разведенную среду глюкозопептонной воды готовят так же, как концентрированную, но количество ингредиенов в 10 раз меньше на 1 л воды. Лактозо-пептонную среду готовят так же как ГПС, с заменой глюкозы на лактозу. Среды стерилизуют при 112°С 12 мин. - среду Эндо. Среду готовят из сухого порошка по прописи, указанной на этикетке банки. Состав порошка: сухой мясо-пептонный агар, лактоза, основной фуксин, сульфит натрия. Среду готовят в день ее использования. Горячую среду различают в стерильные чашки Петри и оставляют до застывания на поверхности стола. Хранить чашки со средой можно не более 3 дней в темном месте или в холодильнике. - среду Эндо с молоком ( по Г. П. Калине). Среду готовят из сухого порошка, но воды берется меньше: к 90 мл среды добавляют 10 мл стерильного молока, 0,2 мл 10% спиртового раствора основного фуксина, 0,2 мл 5% спиртового раствора розоловой кислоты, тщательно перемешают зоны просветления при выпадении в осадок параказена. - желточно-лактозный бульон с бриллиантовым зеленым. К 700 мл дистиллированной воды добавляют 10 г пептона, 10 г лактозы, 200 мл желчи, 13,3 мл 1% водного раствора бриллиантового зеленого и доливают по 5 мл в пробирки с поплавками, стерилизуют при 112°С 12 мин. - среду ФКП-1. Среду готовят так же, как желточнолактозный бульон, но только лактозы берут 1 г и добовляют 1 г триптофана. - среду Хейфеца. В 1 л воды растворяют при нагревании 10 г пептона, 5 г хлорида натрия, 5 г маннита. Устанавливают рН 7,4-7,6, фильтруют и добавляют 10 мл 5% спиртового раствора розоловой кислоты, 23 мл 0,1% влного раствора метиленового синего. Стерилизуют при 100°С (текучим паром) 20 мин. Зазливают в стерильные пробирки и скашивает со столбиком. Цвет среды краснофиолетовый. - среду Кесслера. К 1 л воды добавляют 10 г пептонна, 50 мл желчи, кипятят 20-30 мин, добавляют 2,5 г лактозы, доводят объем до 1 л, устанавливают рН 7,8-8,2 и добавляют 4 мл 1% водного раствора генциального фиолетового. Среди разливают в пробирки с поплавками и стерилизуют при 0,5 атм. 15 мин. Среда фиолетового цвета. Среда применяется при исследовании почвы. - лактозный бульон с борной кислотой 4. Для обнаружение энтерококков используется: - щелочно-полимиксиновая среда. Приготавливают три раствора по следущим рециптам|Ингредиенты |Обычная |Удвоенная || |концентрация |концетрация ||Раствор 1 |40 мл |70 мл ||мясопептонный | | ||бульон | | ||хлорид натрия |0,5 г |1 г ||глюкоза |1 г |1 г ||дрожжевой экстракт |2 мл (0,2 г) |4 мл (0,4 г) ||жидкий (или сухой) | | ||Раствор 2 |25 мл |12,5 ||вода | | ||дистилли-рованная | | ||карбонат натрия |0,53 г |1,1 г ||Раствор 3 |0,25 г |0,5 ||бикарбонат натрия | | || вода |25 мл |12,5 мл ||дистилли-рованная | | ||полимиксин |20000 ЕД/мл |40000 ЕД/мл ||1,6 % спиртовый |0,5 мл |1 мл ||раствор | | ||бромтимоло-вого | | ||синего | | | Раздельно стерилизуют растворы 1, 2 и 3 при 112°С 12 мин. Растворы смешивается, устанавливают рН 10,0-10,2, добавляют полимиксин, бромтимоловый синий, разливают по 10, 50 и 100 мл во флаконаы (удвоенной концентрации). - молочно-ингибиторная среда Калины. К 85 мл стерильного питательного агара добавляют 15 мл стерильного молока, 1,25 мл 0,01% водного раствора кристаллического фиолетового. Перемешивают и разливают по стерильным чашкам Петри. - желчная среда, среда Турчинского. К 600 мл дистиллированной воды добавляют 400 мл желчи, 35-40 г сухого питательного агара, по 5 г фосфата калия однозамещенного си двузамещенного, 5 г натрий- аммония фосфата. Расплавляют при нагревании, разливают по флакон и стерилизуют при 120°С 20 мин. Перед употреблением в расплавленный остуженный агар добавляют на каждые 100 мл среды 0,5 г глюкозы, 1 мл 1% водного раствора TTX, 0,6 мл 1% водного раствора синего, 20000 ЕД полимиксина М, 1-2 мл 0,1% спиртового раствора фурацилина. Разливают по 20 мл в чашки Петри (толстым слоем). - азидная среда Сланеца-Бкртли. В 1 л дистиллированной воды растворяют ( при нагревании) 30-40 г скхого питательного агара, 4 г фосфата калия однозамещенного, устанавливают рН 7,0; стерилизуют при 120°С 20 мин. Перед употреблением в расплавленный и слегка остуженный агар на каждые 100 мл среды добавляют: 2 мл дрожжевого экстракта, 1 г глюкозы, 0,04 г азида натрия, 1 мл 1% водного раствора TTX. Смешивают и быстро разливают в чашки Петри по 2 мл. 5. Для обнаружение патогенных энтеробактерий спользуется: - селенитовый бульон. Бульон готовят из сухой среды Луйфсона по прописи на этикетке. При необходимости ее можно приготовить следующим образом. Основной раствол: в 1 л воды растворяют 7 г фосфата натрия двуузамещенного безводного, 3 г фосфата натрия однозамещенного, 5 г пептона и 4 г лактозы. Устанавливают рН не выше 7,0. Стерилизуют при 112°С 30 мин. Перед началом работы 2 мл 10 % раствора стерильного кислого селенистокислого натрия. Готовую среду разливают в стерильные пробирки по 5-7 мл. - тетратионатный бульон Мюллера. К 90 мл стерильного мясопептонного бульона добавляют 4,5 г стерильного мела, 2 мл раствора Люголя, 10 мл гипосульфата натрия. ( При приготовлении раствора Люголя к 20 мл дистиллированной воды добавить йодида калия 20 г, йода 25 г, а за тем долить до 100 мл воды). Среда предназначена для накопления в материале сальмонелл. - тетратионатная среда с бриллиантовым зеленым (среда Кауфмана). К 500 мл тетратионатной среды добавляют 25мл стерильрой жклчи и 5 мл 0,1%раствора бриллиантого зеленого. Среда служит для накопления сальмонелл. - трехсахарный агар с мочевиной по Олькеницкому. Среда является дифференциально-диагностической. К 100 мл дистиллированной воды добавляют 2,5 г сухого питательного агара, 1 г лактозы, 1 г сахарозы, 0,1 г глюкозы, 1 г мочевины, 0,02 соли Мола, 0,03 г тиосульфата натрия, 0,4 мл 0,4% водного раствора фенолового красного. Все тщательно перемешивают, устанавливают рН 7,2-7,4, разливают по пробиркам, стерилизуют текучим паром по 20 мин 3 дня подряд. Среду скашивают, оставляя столбик высотой 5 см. Среда после стерилизации бледно-розового цвета. - среда Ресселя. К 100 мл 1,5 %мясопептонного агара добавляют 1 %лактозы, 0,1% глюкозы и 1 мл индикатора Андреде (кислый фуксин, обесцвеченный едким натром) или смесь водного голубого и розоловой кислоты. Устанавливают рН 7,2. Среду разливают в пробирки, стерилизуют при 112°С 20 мин и скашивают, оставляя столбик агара высотой 2-3 см. 6. Для обнаружение иерсиний используется - буферная среда обогащения. Предварительно готовят растворы солей: 3 мл 1/15 М гидрофосфата натрия в 100 мл дистиллированной воды и 7 мл 1/15 М дигидрофосфата натрия, также в 100 мл. Затем добавляют 8,5 г хлорида натрия, доводят общий объем воды до 1 л, фильтруют, устанавливают рН 7,2, разливают в пробирки по 5-6 мл и стерилизуют текучим паром 30 мин. 7. Среды для контроля стерильности: - сахарный бульон Хоттингера. К мясному перевару Хоттингера (140- 160 мг % амминного азота) добавляют 0,5% хлорида натрия, подщелачивают до рН 8-8,2 ( с помощью 10 % раствора едкого натра), кипятят 10 мин и фильтруют через ватный фильтр. Затем в среду вносят 1 % глюкозы, устанавливают рН 7,3-7,5, (с помощью 5 % хлористоводородной кислоты), фильтруют через бумажный фильтр и разливают в стерильные колбы или пробирки. Стерилизация при 120° С 30 мин. - бульон Сабуро. В 1 л дистиллированной воды добавляют 10 г пептона, кипятят 10 мин и фильтруют через бумажный фильт. Затем добавляют 4% глюкозы (или мальтозы), устанавливают рН 5,7 разливают в стерильные колбы и пробирки. стерилизация при 112° С 30 мин. - тиогликолевая среда. К 1 л дистиллированной воды добавляют 15 г гидролизата казеина, 5 г дрожжевого экстракта, 2,5 г хлорида натрия, 0,75 г цистина, 0,75 г агар-агара. Цистина предварительно растворяют в небольшом количества воды (с помощью едкого натра). Устанавливают рН смеси всех компонентов до 8-8,2, кипятят 5-10 мин до полного расплавления агара. Затем добавляют 5 г глюкозы и 0,3 мл тиогликолевой кислоты. Среду фильтруют, устанавливают рН 7,2-7,3 вносят 1 мл раствора резазурина натрия 1:1000, перемешивают и разливают в стерильные пробирки. стерилизация при 120° С 20 мин. Список литературы: Актуальные вопросы эпидемиологии и инфекционных болезней. / Н. А.Семина. – М.: Медицина, 1999 Внутрибольничная инфекция. / Шерертц, Хэмптон, Ристуцина. – Под ред. Р.П. Венцела. – М.: Медицина 1990. Внутрибольничная инфекция. / соавторами. – учебно-методическая пособия,Иркутск, 1999. – 32 с. Дезинфекционное дело. / Гандельсман Берта Израиловна. – Под ред. И. И.Карон. – М.: Медицина, 1971 Медицинская микробиология / Под ред. акад. РАМН В.И. Покровского. – М.:ГЭОТАР-МЕД, 2001. – стр.543-547 Медицинская микробиология. / Гл. ред. В.И. Покровсктй, О. К. Поздеев –М.: ГЭОТАР МЕДИЦИНА, 1998. – стр. 631-656 "Медицинская энциклопедия" РАМН 2001 Russ Portal Company Ltd. Санитарная микробиология и вирусология./ З. Н. Качемасова, С. А.Ефремова, А. М. Рыбакова – М.: Медицина, 1987. – 352 с. "Справочник госпитального эпидемиолога". М.: Хризгостом, 1999 Эпидемиология внутрибольничной инфекций. / Р. Х. Яфаев, Л. П. Зуева. –Ленинград: Медицина, 1989 Эпидемиологические особенности внутрибольничных инфекции в районахСибири и Крайнего севера. / Ратушняк С. С. – автореферат, Иркутск, 1999




Похожие:

Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат icon«Иркутский государственный университет путей сообщения»
На основании Правил приема в 2012 году в федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального...
Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат icon«хламидии»
...
Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат iconИркутский государственный университет путей сообщения иргупс (Ириит) Чернышевского ул., д. 15, Иркутск, 664074
Иркутский государственный университет путей сообщения (Иргупс) проводит Второй международный научно-практический симпозиум «Инновации...
Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат iconЗакрепленная кафедра
Отрасли микробиологии как фундаментальной науки, объекты изучения. Роль микробиологии в формировании основных биологических концепций...
Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат iconУтвержден ректором гоу впо «Сибирский государственный медицинский университет» росздрава академиком рамн профессором В. В. Новицким 23 октября 2009 года тематический план
Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Сибирский государственный медицинский университет...
Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат icon«сибирский государственный медицинский университет»
Всероссийская 70-я итоговая научная студенческая конференция им. Н. И. Пирогова (Томск, 16-18 мая 2011 г.): сборник статей / под...
Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат icon«сибирский государственный медицинский университет»
Всероссийская 70-я итоговая научная студенческая конференция им. Н. И. Пирогова (Томск, 16-18 мая 2011 г.): сборник статей / под...
Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат iconИркутский государственный университет путей сообщения

Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат iconИркутский государственный университет путей сообщения

Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии реферат iconПоложение об аттестационных и апелляционных комиссиях общие положения
Гоу впо «Иркутский государственный университет путей сообщения» (далее Университет)
Разместите кнопку на своём сайте:
Документы


База данных защищена авторским правом ©rushkolnik.ru 2000-2015
При копировании материала обязательно указание активной ссылки открытой для индексации.
обратиться к администрации
Документы